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Registro Completo |
Biblioteca(s): |
Embrapa Meio Ambiente. |
Data corrente: |
04/01/2021 |
Data da última atualização: |
04/01/2021 |
Tipo da produção científica: |
Nota Técnica/Nota Científica |
Autoria: |
BATISTA, I. C. A.; BOARI, A. de J.; KAUFFMANN, C. M.; NECHET, K. de L. |
Afiliação: |
IZABEL CRISTINA ALVES BATISTA, UFV; ALESSANDRA DE JESUS BOARI, CPATU; CATERYNNE MELO KAUFFMANN, UFRA; KATIA DE LIMA NECHET, CNPMA. |
Título: |
Colletotrichum plurivorum causes anthracnose on okra in Brazil. |
Ano de publicação: |
2020 |
Fonte/Imprenta: |
Journal of Plant Pathology, v. 102, n. 4, article 1331, 2020 |
DOI: |
https://doi.org/10.1007/s42161-020-00615-1 |
Idioma: |
Inglês |
Conteúdo: |
Abstract: Okra (Abelmoschus esculentus) is a tropical vegetable cultivated widely in the Amazon region. In August 2016, typical anthracnose symptoms were observed on the leaves of okra in Altamira, Pará, Brazil with 60% disease incidence. Symptomatic leaf tissue were surface sterilized, rinsed with sterile water, and plated on potato dextrose agar. Colonies had greyish white aerial mycelium in 7-day-old cultures at 25±2 °C. Conidiophores were smooth-walled, septate. Conidiogenous cells were hyaline, straight, and 19×4 m. Appressoria were single, elliptical, and 8.5×6.5 m. The conidia were aseptate, cylindrical, with round apex and base, and 13×5 m. The isolated fungus was identified as Colletotrichum sp. The isolate was deposited in Culture Collection of Microorganisms (CMAA), Jaguariúna, Brazil (CMAA 1735). The isolate was further identified by sequencing the actin (ACT), chitin synthase (CHS1), beta-tubulin (TUB) and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) genes (Damm et al. 2019). The sequences were deposited in GenBank (accession Nos. MK495949, MK495952, MK495951 and MK495950) and revealed over 98% identity with Colletotrichum plurivorum (MG747766, MG600847, MG600984 and MK862223). Reference sequences of C. orchidearum and C. magnum species complexes were used for the alignment and the phylogenetic analyses conducted using Bayesian method clustered the isolate in the clade corresponding to Colletotrichum plurivorum. The pathogenicity of the isolate was confirmed by spraying a suspension of conidia (1×106 mL1) on okra cv. Santa Cruz 47 with 46 leaves and the control plants were sprayed with distilled water. The plants were maintained in a dew chamber for 24 h under greenhouse at 27 °C with a 12-h-light/dark photoperiod. After 5 days, dark brown necrotic lesions were observed on the leaves of okra plants whereas control plants were all symptomless. The fungus was re-isolated, and showed the same morphological characteristics as the inoculated strain, fulfilling Kochs postulates. C. plurivorum has been reported to infect papaya (Sun et al. 2019) and cassava (Liu et al. 2019). To our knowledge, this is the first report of Colletotrichum plurivorum causing anthracnose on okra in Brazil. MenosAbstract: Okra (Abelmoschus esculentus) is a tropical vegetable cultivated widely in the Amazon region. In August 2016, typical anthracnose symptoms were observed on the leaves of okra in Altamira, Pará, Brazil with 60% disease incidence. Symptomatic leaf tissue were surface sterilized, rinsed with sterile water, and plated on potato dextrose agar. Colonies had greyish white aerial mycelium in 7-day-old cultures at 25±2 °C. Conidiophores were smooth-walled, septate. Conidiogenous cells were hyaline, straight, and 19×4 m. Appressoria were single, elliptical, and 8.5×6.5 m. The conidia were aseptate, cylindrical, with round apex and base, and 13×5 m. The isolated fungus was identified as Colletotrichum sp. The isolate was deposited in Culture Collection of Microorganisms (CMAA), Jaguariúna, Brazil (CMAA 1735). The isolate was further identified by sequencing the actin (ACT), chitin synthase (CHS1), beta-tubulin (TUB) and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) genes (Damm et al. 2019). The sequences were deposited in GenBank (accession Nos. MK495949, MK495952, MK495951 and MK495950) and revealed over 98% identity with Colletotrichum plurivorum (MG747766, MG600847, MG600984 and MK862223). Reference sequences of C. orchidearum and C. magnum species complexes were used for the alignment and the phylogenetic analyses conducted using Bayesian method clustered the isolate in the clade corresponding to Colletotrichum plurivorum. The pathogenicity of the isolate was confirmed... Mostrar Tudo |
Palavras-Chave: |
Ascomycetes; Fungal pathogen; Vegetable. |
Thesagro: |
Abelmoschus Esculentus; Antracnose; Doença de Planta; Quiabo. |
Thesaurus Nal: |
Anthracnose; Fungal diseases of plants; Okra. |
Categoria do assunto: |
H Saúde e Patologia |
Marc: |
LEADER 03078naa a2200289 a 4500 001 2128953 005 2021-01-04 008 2020 bl uuuu u00u1 u #d 024 7 $ahttps://doi.org/10.1007/s42161-020-00615-1$2DOI 100 1 $aBATISTA, I. C. A. 245 $aColletotrichum plurivorum causes anthracnose on okra in Brazil.$h[electronic resource] 260 $c2020 520 $aAbstract: Okra (Abelmoschus esculentus) is a tropical vegetable cultivated widely in the Amazon region. In August 2016, typical anthracnose symptoms were observed on the leaves of okra in Altamira, Pará, Brazil with 60% disease incidence. Symptomatic leaf tissue were surface sterilized, rinsed with sterile water, and plated on potato dextrose agar. Colonies had greyish white aerial mycelium in 7-day-old cultures at 25±2 °C. Conidiophores were smooth-walled, septate. Conidiogenous cells were hyaline, straight, and 19×4 m. Appressoria were single, elliptical, and 8.5×6.5 m. The conidia were aseptate, cylindrical, with round apex and base, and 13×5 m. The isolated fungus was identified as Colletotrichum sp. The isolate was deposited in Culture Collection of Microorganisms (CMAA), Jaguariúna, Brazil (CMAA 1735). The isolate was further identified by sequencing the actin (ACT), chitin synthase (CHS1), beta-tubulin (TUB) and glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) genes (Damm et al. 2019). The sequences were deposited in GenBank (accession Nos. MK495949, MK495952, MK495951 and MK495950) and revealed over 98% identity with Colletotrichum plurivorum (MG747766, MG600847, MG600984 and MK862223). Reference sequences of C. orchidearum and C. magnum species complexes were used for the alignment and the phylogenetic analyses conducted using Bayesian method clustered the isolate in the clade corresponding to Colletotrichum plurivorum. The pathogenicity of the isolate was confirmed by spraying a suspension of conidia (1×106 mL1) on okra cv. Santa Cruz 47 with 46 leaves and the control plants were sprayed with distilled water. The plants were maintained in a dew chamber for 24 h under greenhouse at 27 °C with a 12-h-light/dark photoperiod. After 5 days, dark brown necrotic lesions were observed on the leaves of okra plants whereas control plants were all symptomless. The fungus was re-isolated, and showed the same morphological characteristics as the inoculated strain, fulfilling Kochs postulates. C. plurivorum has been reported to infect papaya (Sun et al. 2019) and cassava (Liu et al. 2019). To our knowledge, this is the first report of Colletotrichum plurivorum causing anthracnose on okra in Brazil. 650 $aAnthracnose 650 $aFungal diseases of plants 650 $aOkra 650 $aAbelmoschus Esculentus 650 $aAntracnose 650 $aDoença de Planta 650 $aQuiabo 653 $aAscomycetes 653 $aFungal pathogen 653 $aVegetable 700 1 $aBOARI, A. de J. 700 1 $aKAUFFMANN, C. M. 700 1 $aNECHET, K. de L. 773 $tJournal of Plant Pathology$gv. 102, n. 4, article 1331, 2020
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Registro original: |
Embrapa Meio Ambiente (CNPMA) |
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Registro Completo
Biblioteca(s): |
Embrapa Agrossilvipastoril. |
Data corrente: |
14/01/2019 |
Data da última atualização: |
19/08/2019 |
Tipo da produção científica: |
Capítulo em Livro Técnico-Científico |
Autoria: |
RODRIGUES, S. M. M. |
Afiliação: |
SANDRA MARIA MORAIS RODRIGUES, CNPA. |
Título: |
Distribuição espacial de mosca-branca (Bemisia tabaci biótipo B, Hemiptera: Aleyrodidae) em algodoeiro. |
Ano de publicação: |
2019 |
Fonte/Imprenta: |
In: FARIAS NETO, A. L. de; NASCIMENTO, A. F. do; ROSSONI, A. L.; MAGALHÃES, C. A. de S.; ITUASSU, D. R.; HOOGERHEIDE, E. S. S.; IKEDA, F. S.; FERNANDES JUNIOR, F.; FARIA, G. R.; ISERNHAGEN, I.; VENDRUSCULO, L. G.; MORALES, M. M.; CARNEVALLI, R. A. (Ed.). Embrapa Agrossilvipastoril: primeiras contribuições para o desenvolvimento de uma agropecuária sustentável. Brasília, DF: Embrapa, 2019. pt. 6, cap. 4, p. 402-405. |
Idioma: |
Português |
Conteúdo: |
A mosca-branca (B. tabaci biótipo B) é um inseto sugador, capaz de se alimentar de centenas de espécies vegetais, cuja reprodução pode ocorrer com ou sem a presença do macho. Sua população vem aumentando consideravelmente safra após safra nos plantios de algodão em Mato Grosso. Araújo et al. (2000) relatam que o período crítico do algodoeiro ao ataque da mosca-branca inicia-se na emergência das plantas e perdura até o aparecimento dos primeiros capulhos. Para obter-se uma pluma sem pegajosidade é necessário que sua densidade populacional esteja abaixo do nível de controle após a abertura das primeiras maçãs (Araújo; Bleicher, 2004). O manejo da B. tabaci biótipo B tem sido desafiador, pois a sua dispersão entre as culturas, seu alto potencial reprodutivo, seu hábito polífago, a resistência aos inseticidas e seu comportamento de se alimentar e viver na superfície abaxial das folhas contribui para a complexidade e dificuldade de seu controle (Naranjo; Flint, 1995). Uma das premissas do manejo integrado de pragas é que se faça uma amostragem adequada dos insetos na lavoura. Para isso, é necessário saber como os indivíduos em uma população estão dispersos, se apresentam um padrão aleatório, regular, agregado ou, ainda, regular agregado (Odum; Barret, 2007). A mosca-branca é considerada um inseto com distribuição espacial do tipo agregada em algodoeiro (Naranjo; Flint, 1994; Rodrigues et al., 2010), mas Pereira et al. (2004) relatam que essa praga tem distribuição regular em feijoeiro. Quando a amostragem não se ajusta ao padrão de distribuição espacial do inseto é certo que haverá erros na sua estimativa populacional, e esses erros se refletirão nas tomadas de decisão por parte dos técnicos responsáveis pelo manejo das pragas na propriedade. As áreas produtoras de algodão no Brasil passaram por diversas transformações ao longo das últimas décadas, tanto na adoção de tecnologias como na extensão, pois passaram de áreas com módulos de um, dois ou dez hectares para módulos com dezenas e até centenas de hectares. Em virtude da ampliação das áreas pode-se pensar que o inseto mudou seu comportamento de distribuição dentro da lavoura. Para responder a esse questionamento desenvolveu-se esta pesquisa cujo objetivo foi determinar a distribuição espacial da mosca-branca em uma área de 50 hectares plantada com algodoeiro. MenosA mosca-branca (B. tabaci biótipo B) é um inseto sugador, capaz de se alimentar de centenas de espécies vegetais, cuja reprodução pode ocorrer com ou sem a presença do macho. Sua população vem aumentando consideravelmente safra após safra nos plantios de algodão em Mato Grosso. Araújo et al. (2000) relatam que o período crítico do algodoeiro ao ataque da mosca-branca inicia-se na emergência das plantas e perdura até o aparecimento dos primeiros capulhos. Para obter-se uma pluma sem pegajosidade é necessário que sua densidade populacional esteja abaixo do nível de controle após a abertura das primeiras maçãs (Araújo; Bleicher, 2004). O manejo da B. tabaci biótipo B tem sido desafiador, pois a sua dispersão entre as culturas, seu alto potencial reprodutivo, seu hábito polífago, a resistência aos inseticidas e seu comportamento de se alimentar e viver na superfície abaxial das folhas contribui para a complexidade e dificuldade de seu controle (Naranjo; Flint, 1995). Uma das premissas do manejo integrado de pragas é que se faça uma amostragem adequada dos insetos na lavoura. Para isso, é necessário saber como os indivíduos em uma população estão dispersos, se apresentam um padrão aleatório, regular, agregado ou, ainda, regular agregado (Odum; Barret, 2007). A mosca-branca é considerada um inseto com distribuição espacial do tipo agregada em algodoeiro (Naranjo; Flint, 1994; Rodrigues et al., 2010), mas Pereira et al. (2004) relatam que essa praga tem distribuição regular em feij... Mostrar Tudo |
Palavras-Chave: |
Mato Grosso; Mosca-branca; Sinop-MT. |
Thesagro: |
Algodão; Bemisia Tabaci; Hemíptera; Mosquito do Algodoeiro. |
Categoria do assunto: |
O Insetos e Entomologia |
URL: |
https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/200567/1/2019-cpamt-agrossilvipastoril-part-6-cap-4-distriuicao-espacial-mosca-branca-algodoeiro-p-402-405.pdf
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Marc: |
LEADER 03409naa a2200205 a 4500 001 2104006 005 2019-08-19 008 2019 bl uuuu u00u1 u #d 100 1 $aRODRIGUES, S. M. M. 245 $aDistribuição espacial de mosca-branca (Bemisia tabaci biótipo B, Hemiptera$bAleyrodidae) em algodoeiro.$h[electronic resource] 260 $c2019 520 $aA mosca-branca (B. tabaci biótipo B) é um inseto sugador, capaz de se alimentar de centenas de espécies vegetais, cuja reprodução pode ocorrer com ou sem a presença do macho. Sua população vem aumentando consideravelmente safra após safra nos plantios de algodão em Mato Grosso. Araújo et al. (2000) relatam que o período crítico do algodoeiro ao ataque da mosca-branca inicia-se na emergência das plantas e perdura até o aparecimento dos primeiros capulhos. Para obter-se uma pluma sem pegajosidade é necessário que sua densidade populacional esteja abaixo do nível de controle após a abertura das primeiras maçãs (Araújo; Bleicher, 2004). O manejo da B. tabaci biótipo B tem sido desafiador, pois a sua dispersão entre as culturas, seu alto potencial reprodutivo, seu hábito polífago, a resistência aos inseticidas e seu comportamento de se alimentar e viver na superfície abaxial das folhas contribui para a complexidade e dificuldade de seu controle (Naranjo; Flint, 1995). Uma das premissas do manejo integrado de pragas é que se faça uma amostragem adequada dos insetos na lavoura. Para isso, é necessário saber como os indivíduos em uma população estão dispersos, se apresentam um padrão aleatório, regular, agregado ou, ainda, regular agregado (Odum; Barret, 2007). A mosca-branca é considerada um inseto com distribuição espacial do tipo agregada em algodoeiro (Naranjo; Flint, 1994; Rodrigues et al., 2010), mas Pereira et al. (2004) relatam que essa praga tem distribuição regular em feijoeiro. Quando a amostragem não se ajusta ao padrão de distribuição espacial do inseto é certo que haverá erros na sua estimativa populacional, e esses erros se refletirão nas tomadas de decisão por parte dos técnicos responsáveis pelo manejo das pragas na propriedade. As áreas produtoras de algodão no Brasil passaram por diversas transformações ao longo das últimas décadas, tanto na adoção de tecnologias como na extensão, pois passaram de áreas com módulos de um, dois ou dez hectares para módulos com dezenas e até centenas de hectares. Em virtude da ampliação das áreas pode-se pensar que o inseto mudou seu comportamento de distribuição dentro da lavoura. Para responder a esse questionamento desenvolveu-se esta pesquisa cujo objetivo foi determinar a distribuição espacial da mosca-branca em uma área de 50 hectares plantada com algodoeiro. 650 $aAlgodão 650 $aBemisia Tabaci 650 $aHemíptera 650 $aMosquito do Algodoeiro 653 $aMato Grosso 653 $aMosca-branca 653 $aSinop-MT 773 $tIn: FARIAS NETO, A. L. de; NASCIMENTO, A. F. do; ROSSONI, A. L.; MAGALHÃES, C. A. de S.; ITUASSU, D. R.; HOOGERHEIDE, E. S. S.; IKEDA, F. S.; FERNANDES JUNIOR, F.; FARIA, G. R.; ISERNHAGEN, I.; VENDRUSCULO, L. G.; MORALES, M. M.; CARNEVALLI, R. A. (Ed.). Embrapa Agrossilvipastoril: primeiras contribuições para o desenvolvimento de uma agropecuária sustentável. Brasília, DF: Embrapa, 2019. pt. 6, cap. 4, p. 402-405.
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Embrapa Agrossilvipastoril (CPAMT) |
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